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尾静脉注射前沿信息_id h im iv注射法总结(2024年12月实时热点)

内容来源：兔耳朵在线影院所属栏目：教程更新日期：2024-12-03

尾静脉注射

大小鼠腹腔注射药剂量指南 𐟐�’‰ 在教学和科研中，大鼠和小鼠是常用的实验动物。给药方式有多种，包括灌胃、腹腔注射和尾静脉注射等。无论采用哪种方式，都需要确保给药剂量准确、操作方便且对动物刺激最小。 𐟒‰ 腹腔注射的目的腹腔注射是将药物注入动物腹腔，利用腹膜和大小网膜血管丰富、吸收面积大、吸收能力强等特点，使药物快速入血。这种方法适用于多种刺激性小的水溶性药物，是啮齿类动物常用的给药途径之一。 𐟓 药物注射部位的选择选择合适的注射部位非常重要。腹腔注射通常选择下腹部，因为上腹部有肝、脾等重要脏器，可能会伤及这些器官。最佳进针部位为下腹部的腹中线，因为这里没有腹肌，血液循环丰富，损伤时易出血。 𐟔 注射针的进针进针时需要注意以下几点：角度：注射针与皮肤间的夹角不宜过小或过大，否则容易进入皮下或肠道。深度：一般进针不超过1cm，过深可能刺破内脏，过浅则难以进入腹腔。感受：进针时可以通过视觉感受和手感来确认针头是否进入腹腔。视觉感受是看进针点皮肤的凹陷，手感则是感觉到阻力后消失的落空感。 𐟓Š 不同给药方式的剂量不同种类实验动物同一种给药方法一次给药能耐受的最大容量不同，同种实验动物不同给药方法一次给药能耐受的最大容量也不同。具体剂量可以参考下表：不同种类实验动物不同给药方法一次给药能耐受的最大容量(ml)：如图所示通过这些信息，你可以更好地掌握大小鼠腹腔注射的药剂量，确保实验顺利进行。

小鼠的血脑屏障突没突破不清楚，我是快要变身阿凡达了，打染料针筒爆管，喷白大褂一身。我的白大褂，至此，已成艺术！尾静脉注射难度已超过流式，成为新的一生之敌[裂开][裂开][裂开]

「nycc2024」去美国ⷎew York Comic-Con只为了买漫展限定ⷥ𗦊먐觚„纽约大老鼠。 𐟐�仅打了耳标，尾巴上还有尾静脉注射后贴的创可贴，一看就是谁家实验室逃出来的[偷笑]

STZ注射操作指南：细节决定成败 𐟒‰ 在进行STZ注射之前，有几个关键步骤需要注意。首先，确保动物在过夜禁食后已经称重，并按照动物数量和注射剂量计算出所需的STZ量。将STZ冻干粉称取后放入干燥的无菌瓶中，并用铝箔或锡箔纸包好。将柠檬酸缓冲液和装有STZ的瓶子提前放入冰浴中，然后带到动物房。注射时，推进速度与血糖关系密切。一般来说，推注速度快更容易形成高血糖，而推注速度慢则相对安全。常规操作中多要求快速注射。当然，STZ的剂量是决定血糖高低的主要因素。腹腔注射和静脉注射的区别在于，静脉注射（尾静脉注射）药物利用率高，且药量相对节省，但操作不如腹腔注射方便。如果模型不达标，可以在稳定后再次注射STZ，剂量为10mg-20mg/kg体重，根据实际情况选择合适剂量。或者待血糖恢复正常后再按常规剂量注射。为了达到理想效果，通常建议在恢复到正常状态下重新造模。解决死鼠问题也是操作中的重要一环。鼠的个体差异和空腹（低血糖）抵抗力不同，可能导致死亡率不同。开始时死亡率高可能是因为血糖突然升高，鼠不适应，或者发生了糖尿病酮症酸中毒（diabetic ketoacidosis, DKA）。为了降低或避免死亡，可以采取以下措施：确保足够的饮水量，饮水量不足容易导致死鼠。高血糖和低血糖都会造成死鼠，可以通过注射胰岛素或补糖来避免。例如，常见的是血糖过高，可以使用补胰岛素法，每次2-3个单位的中效胰岛素（如中性低精蛋白锌人胰岛素），过了3-5天，大鼠的死亡率一般会降低。补糖法，禁食后的鼠，注射时已经处于低血糖状态，造模4小时后腹腔注射20%葡萄糖，可避免因注射时血糖过低引起的死鼠。防止动物自相残杀，食物缺乏和供水不足的情况下，会互相撕杀、啃食同类，所以食物和饮水要供应充足，最好是两路供应。防止感染，糖尿病大鼠尿量多，垫料潮湿，需要勤换垫料。腹腔注射、皮下注射及采血测血糖等侵入性操作前后，要注意消毒工作。如每次采血测血糖后可用四环素（或金霉素眼药膏）局部涂抹处理伤口预防感染。通过这些细节的注意和处理，可以确保STZ注射操作的顺利进行，并获得理想的实验结果。

东大医学院新学期，加油！东南大学医学院的新学期已经开始了，早开学也要好好生活哦！𐟌ž 新学期意味着要更加珍惜时间，把想做的事情都尽量完成。𐟓š 身体和学习同样重要，所以我买了新的瑜伽裤和运动服，打算开始健身和游泳啦！𐟏Š‍♀️ 暑假期间，学校在江北上课，课题组非常慷慨地请我们吃东西，课程实验也很有趣。𐟍” 唯一有点难的是尾静脉注射，看到师姐一针见血，真是太牛了！𐟒‰ 看来唯手熟尔这句话真没错。总之，新学期要有新的开始，好好生活，好好学习！𐟒ꀀ

卡拉胶诱导血栓，注射有讲究！ 𐟐�𐾩™脉注射诱导血栓模型 𐟓Š 向尾尖方向注射药物与向尾巴根基部注射药物的效果对比：向尾尖方向注射药物：向小鼠尾尖方向分别注射药物浓度为10mg/kg, 30mg/kg, 50mg/kg, 60mg/kg, 70mg/kg的1%k-卡拉胶溶液。24小时后，②/③血栓长度为0cm，①-0.7cm/③-0.6cm(断层)/④-0.6cm。向尾巴根基部注射药物：向小鼠尾巴根基部分别注射药物浓度为10mg/kg，30mg/kg，50mg/kg，60mg/kg，70mg/kg的1%k-卡拉胶溶液。24小时后，②/③血栓长度为0cm，①-0.7cm/③-0.6cm(断层)/④-0.6cm。 𐟓Š 不同浓度卡拉胶溶液的效果对比： 1%配药浓度：10mg/kg, 30mg/kg, 50mg/kg, 60mg/kg, 70mg/kg 0.5%配药浓度：10mg/kg, 30mg/kg, 50mg/kg, 70mg/kg 𐟓… 注射后24小时至72小时的血栓测量结果显示，50mg/kg > 70mg/kg > 10mg/kg > 30mg/kg。 𐟧Š 冰浴5分钟对实验结果的影响：在进行尾静脉注射后，立即进行冰浴5分钟，以观察对实验结果的影响。 𐟔 通过这些实验数据，我们可以更好地理解卡拉胶在不同浓度和注射方向下对小鼠血栓形成的影响，为相关研究提供有价值的参考。

2024年10月，中山大学肖振东独立通讯在Hepatology （IF=12.9）在线发表题为“Pseudouridine synthase 1 promotes hepatocellular carcinoma through mRNA pseudouridylation to enhance the translation of oncogenic mRNAs”的研究论文。该研究通过分析TCGA数据集，发现PUS1在人类HCC标本中显著上调，并与肿瘤等级和HCC的不良预后呈正相关。 PUS1的敲低抑制了细胞增殖并减少了皮下异种移植小鼠模型中的肿瘤生长。相应地，在PUS1过表达的细胞中，观察到细胞增殖和肿瘤生长显著增加。此外，PUS1过表达显著加速了通过动态尾静脉注射建立的小鼠HCC模型中的肿瘤形成，而PUS1的敲除则减少了肿瘤形成。此外，PUS1的催化活性对于HCC肿瘤发生是必需的。在机制方面，作者通过利用载脂蛋白B mRNA编辑酶1（APOBEC1）介导的分析方法，确定了PUS1的mRNA靶标，发现PUS1将假尿苷引入一组癌基因的mRNA中，从而增强了这些mRNA的翻译能力。作者的研究突出了PUS1和假尿苷化在HCC发展中的关键作用，并提供了新的见解，即PUS1通过假尿苷化介导的mRNA翻译，增强了一组癌基因（包括胰岛素受体底物1（IRS1）和c-MYC）的蛋白质水平。「iNature」

动物实验设计全攻略，手把手教你搞定！嘿，大家好！今天我要给大家分享一份超详细的动物实验设计全攻略，保证你看完之后能轻松上手！𐟓–✨ 一、选择合适的动物模型首先，你得挑选合适的动物模型。这个模型得符合你的实验要求，比如数量、体重、性别和年龄等等。举个例子，你可能需要40只雌性C67/6J小鼠，年龄在5-6周，体重大约18克。二、设置对照组对照组的设置也很重要。你可以选择以下几种方式：自身对照：同一个动物在不同时间点的对照。组间对照：包括正常组、模型组、阳性对照组和给药组。小鼠标记法：可以用染色标记法或者耳标签法来区分不同的组别。例如，你可以设置正常组、模型组（CUMS干预）、模型组+药物低剂量、模型组+药物中剂量、模型组+药物高剂量和模型组+阳性药物。三、确定剂量组别药效学一般需要设计三个剂量组，比如模型组+药物低剂量、模型组+药物中剂量和模型组+药物高剂量。剂量组别的设置原则有两个：量效曲线和等比级数递增。例如，可以是2mg/kg、4mg/kg和8mg/kg。四、给药方式给药的次数要确定，比如每天一次或者每周两次。给药方式也有多种选择，包括灌胃、腹腔注射、尾静脉注射和皮下注射。溶剂的选择也很重要，比如DMSO、吐温或者橄榄油。五、药效评价指标最后，你得确定药效评价指标。这些指标可以分为观察指标和评价指标：观察指标：体重、粪便、毛发、摄食和饮水等。评价指标：血常规、生化检测（评估心肝肾）、B超、CT、核磁、X光、血流监测、生理监测仪、动物运动与平衡能力、动物抑郁与焦虑状态、动物学习与认知能力以及动物社交能力等。切片染色：HE染色观察目标组织，特殊染色如纤维化、成骨分化血管钙化等，免疫组化检测标志物。希望这份攻略能帮到你，祝你的动物实验顺利！𐟐�’ꀀ

阿尔茨海默病大鼠模型建立及行为学检测 𐟐�补ž‹建立：采用SD大鼠，通过1%戊巴比妥钠40/g腹腔内注射麻醉，固定于脑立体定位仪上。根据大鼠脑立体定位图谱，以前囟为零起点，前囟后3.5 mm处为穿刺点，中线右侧旁开2mm，使用牙科钻钻开颅骨。采用微量注射器自脑表面垂直进针3mm，即(AP= -3.5 mm, ML=2.0 mm, DV=3.0 mm)，双侧海马CA1区缓慢匀速注射A-40各10  (1 )，留针5 min，退针后缝合伤口。 𐟒‰ 造模后3天，开始尾静脉注射生理盐水，大鼠每只给药100/次/d，连续给药21天。 𐟧頨ጤ𘺥�〦𕋯𜚊在给药后21天，进行Morris水迷宫试验，分为定位航行实验和空间探索实验。定位航行实验：大鼠连续接受5天训练，每天4次，每次时间间隔30min，记录下大鼠从4个入水点和入水并找到平台所需要的时间，即逃避潜伏期。4次潜伏期的平均成绩作为当日的最终结果。空间探索实验：实验第6天，撤去平台，从距离平台的最远端入水后，将大鼠放入水中，记录下30s内大鼠的游泳轨迹，观察分析大鼠在目标象限的停留时间及穿越平台的次数。 𐟧젧𛄧𛇧—…理学：尼氏染色：海马组织固定后石蜡切片，进行尼氏染色，观察海马区神经细胞形态和数量。光学显微镜下计数视野下每组大鼠同一部位的神经元数量。免疫荧光染色：观察海马区A-40染色情况。荧光显微镜下计数视野下每组大鼠同一部位的阳性斑块数量。 TUNEL染色：观察神经元凋亡情况。荧光学显微镜下计数视野下每组大鼠同一部位的阳性染色数量。 𐟔젦 ‡志因子水平： RT-qPCR检测：收集海马组织，提取RNA，反转录cDNA，PCR检测caspase-3，Bcl-2和Bax的表达。 Western-blot检测：收集海马组织蛋白，检测active-caspase-3，Bcl-2和Bax的蛋白表达。

𐟐�𐥞‹老鼠实验固定设备大揭秘𐟔 𐟔즎⧴⥸‚场上最新型的老鼠实验固定设备，为你的科学研究提供便利！ 1️⃣ 𐟐€大小鼠圆筒透明固定器：专为尾静脉注射、取血实验设计，让小鼠自行从筒后端钻入，操作简单，实验更精准。 2️⃣ 𐟒‰新型电针实验大鼠固定装置：操作台配备头颈固定部和四肢固定部，确保大鼠稳定不动，实验数据更可靠。 3️⃣ 𐟔„新型大鼠尾静脉采血固定装置：筒状主体搭配铁架台，固定大鼠尾部，采血过程更顺畅，减少实验误差。 4️⃣ 𐟒Ჰg小鼠固定器：全透明亚克力材质，便于观察实验情况。堵头可调，适应不同大小小鼠，操作灵活。 5️⃣ 𐟔纫-GDQ-小鼠固定器：新研制实验器材，设计合理，装卸方便，坚固耐用，使用范围广泛。 6️⃣ 𐟒‰用于大鼠尾静脉穿刺的联用固定器：多只大鼠同时固定穿刺，尾静脉血管扩张，提高实验效率。 𐟎‰以上就是市场上备受瞩目的新型老鼠实验固定设备，根据你的实验需求选择最合适的设备吧！

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